Beiträge von Hobbe

    Hi,

    heute habe ich bestellten Gilbers PO4 Test bekommen (schönes Köfferchen übrigens).
    Und natürlich gleich mal ausprobiert. Anfangs war ich ein wenig skeptisch.
    Die Farbabstufungen im unteren Bereich haben sehr ähnliche, gelbliche Töne und dazu noch ein gelber Komperatorblock?
    Naja, was soll ich sagen: Nach einsetzen der Probe und dem Vergleichsgläschen konnte der Bereich doch ziemlich genau bestimmt werden.
    Mein Ergebnis liegt zwischen 0,025 und 0,05mg/l.

    Das deckt sich nahezu mit meinem Hanna Tester, worüber ich sehr erfreut bin!
    Vor ein paar Jahren war ich nämlich schon kurz davor das Teil wieder zu verkaufen, da ich anfangs sehr unterschiedliche Ergebnisse angezeigt bekam. Als ich nach Erfahrungen und Tipps im Internet suchte, fand ich viele Beiträge in denen der Tester schlechtgeredet wurde. Nach dem Artikel im Meerwasseraquarianer 2011 machte ich nochmal ein paar Versuche und musste feststellen, dass meine Ergebisse immer konstanter und v.a. reproduzierbar wurden. Zum Glück lag es an meinem anfänglichen Unvermögen und nicht am (2010 importierten) Gerät.

    Aber mal zurück zu den heutige Tests:

    Natürlich habe ich 10ml der angesetzten Gilbers Probe, nach den 10 Minuten Entwicklungszeit, auch in den Hanna geworfen:
    7; 7; 7; 8; 7
    Auf jeden Fall sehr konstant, aber wohl zu niedrig.

    Die Salifert Reagenzien zeigen immer noch den selben Effekt. Gleich nach dem zusammenmischen passt der Wert, nach spätestens 2 Minuten liegt er nahezu beim Doppelten.

    Ich denke aber, genau wie Armin, dass egal welche Reagenzien man verwendet, nach einer bestimmte Reaktionszeit die Ergebnisse nahezu konstant sind.
    Deshalb wird man den Hanna, mit entsprechenden Korrekturfaktoren, auch mit den anderen Reagenzien benutzen können.
    Zumal beim Hannapulver, ja nach Los, auch mal mit kleinen Verschiebungen zu rechnen ist.


    Gruss Hobbe

    Hi,

    habe heute nochmal einen Test mit den Salifert Reagenzien gemacht.
    Eine Messung sofort nach Zugabe der Chemikalien ergab die folgenden Werte:
    14; 13; 15

    Sieht brauchbar aus, habe allerdings nicht mit Original Hanna gegengemessen.
    Aber!
    Ich machte nach nur ca. 1 Minute den Test nochmal:
    23; 26; 28;

    Hmmm, fast das doppelte...
    Entweder schnell messen, oder warten (ca. 6 Minuten) bis die Werte konstant sind und anschließend runterrechen?
    Sieht nach noch mehr Tests aus...
    Verdammt, ich brauch unbedingt einen Referenzwert.

    Gruss Hobbe

    Edit: Armin: Da warst du wohl schneller, genau das habe ich auch vermutet

    Hallo,

    Fall es jemanden interessiert:
    Ich habe vor kurzem ein paar Versuche mit dem Hanna Photometer gemacht, aber als Reagenzien die des Salifert Testes verwendet.
    Getestet wurde pro Durchgang immer 3 mal, wie oben beschrieben (C1 mit AQ-Wasser in Küvette 1, C2 mit AQ-Wasser + Reagenz in Küvette 2) um die Ergebnisse etwas zu "normalisieren", dann nur die Messung.
    Begonnen habe ich sofort nach der Zugabe der Reagenzien. Dann immer im 3 Minutentakt (Countdown mittels Hanna Photometer).
    Es wurde also immer die gleiche Analyse verwendet, nicht nochmal neu angesetzt.
    Zum Vergleich habe ich ein Original Hanna Päckchen geopfert, um zu sehen ob ähnliche Werte herauskommen.
    Hier die Ergebnisse:

    Hanna Pulver:

    Nach Zugabe des Pulvers und
    2 Minuten schütteln: 19; 17; 17
    Nach 3 Minuten: 17; 17; 16
    Nach 6 Minuten: 14; 13; 16
    Nach 9 Minuten: 15; 16; 14


    Salifert Reagenzien:

    Nach Zugabe von 4 Tropfen Reagenz 1 und 1 Messlöffel Reagenz 2 und
    30 Sekunden mischen: 14; 18; 16
    Nach 3 Minuten: 32; 31; 33
    Nach 6 Minuten: 38; 40; 38
    Nach 9 Minuten: 38; 37; 40

    Man sieht dass die Hanna Reagenz über die gesamte Testdauer ähnliche Ergebnisse liefert.
    Die Salifertchemikalien scheinen nicht so "stabil" zu sein. In der Anleitung des PO4 Tests von Salifert ist aber auch keine Entwicklungszeit vorgesehen. Somit müsste auch die 1.Testreihe am genauesten sein.
    Bei Hanna sind die 3 Minuten Reaktionszeit schon in der Anleitung beschrieben. Also müsste hier die 2.Testreihe die aussagekräftigste sein. Was aber keine Rolle spielt, da in meinem Fall der Test über die gesamte Dauer nahezu konstante Werte liefert.
    Überraschend ist für mich, dass eigentlich keine Unterschiede bei Testreihe 1 (Salifert) und Testreihe 2 (Hanna) festzustellen sind.

    Die Reagenzien von Salifert könnten also eine Alternative zu Original Hanna sein. Kostengünstiger und das Gefummel mit den Tütchen hätte ein Ende.
    Allerdings hatte ich keine Referenzlösung mehr. Mit der hätte ich zu gerne die ganzen Tests nochmal gemacht. Auch wäre ein Gilbers oder ROWA PO4 Test als Vergleich schön gewesen, hab ich aber auch nicht.
    Auf jeden Fall werde ich das Ganze weiter beobachten und schauen ob die Ergebnisse kein Zufall waren. Evtl. mal einen Gilbers kaufen. Da ist glaub ich auch eine Refernz dabei.


    Gruss Hobbe


    P.S: Die Werte könnt ihr ja selber umrechnen. Ist was um die 0.05 mg/l.

    Danke für die schnelle Antwort!

    Ich dachte die Cyanos erst loswerden zu müssen bevor ich Korallen einsetze. Für Steinkorallen wäre es aufgrund der kurzen Standzeit wahrscheinlich noch zu früh. Deshalb wohl eher Weichkorallen.

    Eine Bakterienzugabe soll ja angeblich auch helfen. Aber ich glaube das ist bei mir nicht empfehlenswert, da ich sowieso schon ein nährstoffarmes Becken habe, oder?
    Sollte ich erst mal versuchen das NO3 und PO4 etwas anzuheben? Wäre auch eine Milieuveränderung. Dazu könnte ich ja den Abschämer zeitweise außer Betrieb nehmen.
    Mein KH ist auch noch etwas zu niedrig.

    Wie sieht es denn mit den Belägen an sich aus? Ist ein Absaugen notwendig?

    Gruss Hobbe

    Hallo zusammen,

    ich habe in letzter Zeit mit sich immer mehr ausbreitendem dunkelbraunen Belag zu tun. Er ist auf dem Boden und auf den Steinen zu finden.
    Ich habe das ganze mal unter dem Mikroskop angeschaut und denke dass es sich um Cyanos handelt, habe allerdings mit der Auswertung der Bilder keine Erfahrung. Bewegliche Teile (Dinos o.ä.) habe ich aber weder bei 300 noch, bei 600-facher Vergrößerung entdecken können.
    Was mich etwas unsicher macht ist die Tatsache dass ich einen Test mit Ethanol schon gemacht habe, aber komischerweise keine Verfärbung eintrat, trotz Verdacht auf Cyanos. Zudem ist der Belag in keinster Weise rötlich, eher ein tiefes dunkelbraun bzw. schwarzbraun.

    Noch ein paar Infos:
    - Um die Mittagszeit ist der Belag am stärksten vorhanden, Morgens und Abends weniger, Nachts nichts.
    - Er löst sich nicht auf, sondern schwimmt beim anwedeln in Fetzen davon
    - Da meine Nährstoffwerte ganz unten sind, könnte es sich um die sog. Reinwasserform handeln
    - Becken (ca. 110l netto) läuft seit ca. 3 Monaten
    - Besatz: Einsiedler, Schnecken, 1 Seeigel, 1 Weissbandputzergarnele, C.crassa- Minianemone

    Wasserwerte:

    NO3 0,2 mg/l
    PO4 n.n
    Ca 410 mg/l
    Mg 1260 mg/l
    KH 6
    PH 8,0 / 8,4 (morgens / abends)
    Temp 25-26 C°

    Vielen Dank für eure Hilfe
    Gruss Hobbe